Instruções para envio de amostras: Para análise de amostras em gel, o gel ainda hidratado deve ser entregue para o recorte das bandas previamente selecionadas e identificadas pelo solicitante, ou este pode entregá-las cortadas e armazenas cada uma em um eppendorf e sob refrigeração.

Instruções para envio de amostras:Os cristais devem estar acondicionados em placas de ensaio de cristalização de proteínas de modelo compatível com o equipamento PxScanner (Rigaku), com a devida identificação do(s) poço(s) em que estão contidos. As placas poderão ser mantidas em incubadora a 20°C até o momento do ensaio.

Instruções para envio de amostras:As amostras para análise com injeção direta em fonte eletrospray devem estar ausentes de precipitados e partículas, sais, fosfato, PBS (tampão fosfato salino), uréia, Tris, detergente e qualquer tampão de extração. Podem estar solubilizados em bicarbonato, formiato e acetato de amônio (em concentração de até 50 mM) e solventes orgânicos como metanol e acetonitrila. Informar concentração aproximada dos analitos, a concentração mínima para análise de proteínas é de 10 pmol uL-1. As amostras devem ser entregues refrigeradas (2 – 8 °C) ou congeladas.

Instruções para envio de amostras:As amostras líquidas para análise em shotgun-MS devem estar ausentes de precipitados e partículas, sais, fosfato, PBS (tampão fosfato salino), uréia, Tris, detergente e qualquer tampão de extração. Podem estar solubilizados em bicarbonato, formiato e acetato de amônio (em concentração de até 50 mM). Informar concentração total de proteína, é desejável que tenha no mínimo 50 uL de amostra a 1 ug uL-1 para a digestão tríptica. As amostras devem ser entregues refrigeradas (2 – 8 °C).

Instruções para envio de amostras:Os cristais devem estar acondicionados na placa do ensaio de cristalização, com a devida identificação do(s) poço(s) e respectivas soluções em que estão contidos. As placas poderão ser mantidas em incubadora a 20°C até o momento da coleta. É de responsabilidade do usuário o fornecimento de soluções crioprotetoras compatíveis para a coleta. Alternativamente, os cristais podem ser trazidos devidamente congelados e já montados em pins de base magnética, em cryovials próprios para o armazenamento de cristais de proteínas, sendo que neste caso o usuário deverá fornecer todos os acessórios necessários para a transferência de cristais congelados dos cryovials para a cabeça goniométrica do difratômetro. Para a difração de cristais ou outro tipo de amostra que não necessitam de coleta em condições criogênicas, as amostras deverão ser entregues já montadas em loops ou capilares compatíveis com as cabeças goniométricas disponíveis para o equipamento SuperNova (Rigaku).

Instruções para envio de amostras:Material deve chegar refrigerado (2 - 8°), congelado ou liofilizado PCR - ao menos 100 ng de DNA liofilizado ou suspenso em 4µL low TE ou água, A260/280 > 2.0 Plasmídeo - ao menos 300 ng de DNA liofilizado ou suspenso em 4µL low TE ou água, A260/280 > 2.0 gDNA - ao menos 200 ng de DNA liofilizado ou suspenso em 4µL low TE ou água, A260/280 > 2.0 primers para sequenciamento 5µL 10uM em low TE ou água - seqüência deve ser fornecida Não recebemos reações de sequenciamento previamente preparadas ou precipitadas.

Instruções para envio de amostras:Material deve ter dimensões máximas de 1 cm de altura por 1 x 1 cm2 de área; Se células (de qualquer tipo), parasitos, bactérias ou qualquer tipo de material biológico, deverão chegar devidamente fixados (inclusive tendo passado por processo de “ponto crítico”) de acordo com protocolo de preparação e depositado em lâminas de vidro; Se materiais, devem já estar cortados em dimensões apropriadas (descrito anteriormente), limpos e secos. Deve estar evidenciado qual das superfícies do material se deseja analisar (ex. : “deve ser analisado o lado brilhante”, “deve ser analisado o lado cinza” etc.); As amostras não devem ser manuseadas senão por pinças limpas, evitando qualquer tipo de contato com sua superfície e embalados de tal maneira que a tampa do recipiente não toque a superfície da amostra (ex.: caixas de amostra mais profundas com a amostra ligeiramente aderida ou lâminas de vidro dentro de tubos tipo “falcon”).

Instruções para envio de amostras:As amostras devem ser enviadas em frascos devidamente rotulados com o local, horário e data da coleta e mantidas sob refrigeração (caixa isotérmica com gelo reciclado de forma a manter a temperatura entre 2 e 10ºC). O tempo entre a coleta e a chegada ao laboratório não deve ser superior a 8 horas. O volume mínimo necessário para realização da análise é de 10 mL, que devem ser coletados em frascos estéreis, preferencialmente fornecidos pelo Inmetro e em caso de água clorada, devem ser adicionados de tiossulfato de sódio (pastilha ou 0,1 mL de solução a 10%). Orientações gerais para a coleta: Utilizar luvas durante o procedimento; não abrir os frascos até o momento da coleta; em caso de coleta em torneira, esta deve ser higienizada com etanol a 70% e deve-se deixar a água escoar por cerca de 3 minutos; encher o frasco com a amostra até aproximadamente ¾ do seu volume.

Instruções para envio de amostras:Quando realizado em Cabine de Segurança Biológica, ligar antecipadamente luz ultravioleta por 30 minutos. A Dimav não realiza amostragem dinâmica de ar.

Instruções para envio de amostras:As amostras devem ser enviadas em 2 tubos cônicos estéreis (amostra e contraprova) contendo, cada um, no mínimo 3 mL de sobrenadante da cultura de células ou solução. Os tubos contendo o material devem ser identificados com nome da célula, passagem, data de envio e responsável. A temperatura de transporte deve ser entre 4 a 8 oC, com o uso de gelo reciclável (não usar gelo úmido). A amostra não deve conter ação antimicrobiana (como antibiótico); caso haja deverá ser informado o uso.

Instruções para envio de amostras:As amostras devem ser enviadas em frascos devidamente rotulados com o local, horário e data da coleta e mantidas sob refrigeração (caixa isotérmica com gelo reciclado de forma a manter a temperatura entre 2 e 10 ºC). O tempo entre a coleta e a chegada ao laboratório não deve ser superior a 8 horas. O volume mínimo necessário para realização da análise é de 125 mL, que devem ser coletados em frascos estéreis, preferencialmente fornecidos pelo Inmetro e em caso de água clorada, devem ser adicionados de tiossulfato de sódio (pastilha ou 0,1 mL de solução a 10%). Orientações gerais para a coleta: Utilizar luvas durante o procedimento; não abrir os frascos até o momento da coleta; em caso de coleta em torneira, esta deve ser higienizada com etanol a 70% e deve-se deixar a água escoar por cerca de 3 minutos; encher o frasco com a amostra até aproximadamente ¾ do seu volume.

Instruções para envio de amostras:As células devem ser cultivadas em placas multipoços (24, 48, 96 ou 384 poços) específicas para ensaios de fluorescência (placas pretas com fundo claro). As placas multipoços utilizadas devem constar no cadastro do software de aquisição do equipamento (Ex.: Costar 3606 96 poços; Corning 3712/3985 384 poços). A amostra deve chegar à temperatura de 37 °C. O pesquisador deve enviar a microplaca contendo as células vivas/fixadas já com o ensaio de fluorescência finalizado. Obrigatoriamente, um marcador nuclear (DAPI, Hoechst) deve ser utilizado. É possível adquirir e analisar dados de amostras em lâminas/lamínula. O pesquisador deve enviar as amostras já com o ensaio de fluorescência finalizado. Obrigatoriamente, um marcador nuclear (DAPI, Hoechst) deve ser utilizado.

Instruções para envio de amostras:As amostras devem ser enviadas em 2 Tubos cônicos (amostra e contraprova) contendo, cada um, no mínimo 5 mL de sobrenadante da cultura de células ou solução. Os tubos contendo o material devem ser identificados com nome da célula ou solução, data de envio e responsável. A temperatura de transporte deve ser entre 4 a 8 oC, com o uso de gelo reciclável (não usar gelo úmido).

Instruções para envio de amostras:O solicitante deve enviar entre 5 a 10% da quantidade de meio preparado em tubos cônicos. Caso não seja possível, enviar no mínimo 10 tubos do meio em duplicatas. Os tubos contendo o material devem ser identificados com nome do meio de cultura, volume em cada tubo, lote do meio, data de envio e responsável. A temperatura de transporte deve ser entre 4 a 8°C, com o uso de gelo reciclável (não usar gelo úmido).